摘 要:本发明公开一种亚麻蛋白的提取方法及所得亚麻蛋白粉,属于食品加工技术领域?本发明亚麻蛋白的提取方法是以亚麻籽粕为原料,采用了生物酶解和盐析法结合的方法,其中选用了两株功能性菌株,即利文斯顿岛节杆菌和华根霉,两种菌协同发酵能更彻底破坏亚麻籽粕的细胞壁和油脂屏障,且提取条件温和,形成多维度提取优势,显著提高亚麻蛋白提取率,提升亚麻蛋白的纯度,显著改善亚麻蛋白的功能特性?本发明提取方法能最大限度获得高附加值的优质蛋白,为亚麻籽粕生产亚麻蛋白提供了新的有效途径?
权利要求书
1.一种亚麻蛋白的提取方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)菌种活化与扩培:将利文斯顿岛节杆菌和华根霉解冻后分别在LB固体培养基和PDA培养基中活化,先将利文斯顿岛节杆菌单菌落接种至LB液体培养基中,继续20℃?180rpm震荡培养得到利文斯顿岛节秆菌菌液;再将华根霉继续在PDA培养基25℃培养5 7天,用无菌生理盐水冲洗PDA培养面,刮取表面孢子,通过滤布过滤,去除菌丝,将孢子悬液进行稀释得到华根霉孢子悬浮液;
(2)协同发酵:亚麻籽粕粉碎过120目筛,将亚麻籽粕与无菌水混合,121℃灭菌20分钟,冷却至室温,先接种华根霉孢子悬浮液,25℃静置培养48h,再接种利文斯顿岛节杆菌菌液,20℃?150rpm震荡培养72h,协同发酵完成后,100℃灭活酶和菌体,8000rpm离心15min,取上清液;
(3)盐析法提取蛋白:调节上清液pH至4.5,8000rpm离心15mim收集沉淀,用PBS重悬,再将上清液pH调节至7.0,缓慢加入硫酸铵至30%饱和度,4℃搅拌30min,10000rpm离心20min,弃沉淀,将上清液补加硫酸铵至75%饱和度,4℃搅拌30min 1h,4℃?12000rpm离心20min收集沉淀,用超滤法浓缩蛋白,得到亚麻蛋白?
2.根据权利要求1所述的亚麻蛋白的提取方法,其特征在于,所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌菌液培养至活菌数达到1×108CFU/mL;华根霉孢子悬液稀释至孢子数达到1×107CFU/mL?
3.根据权利要求1所述的亚麻蛋白的提取方法,其特征在于,所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌的保藏编号为CGMCC1.15658,购自中国普通微生物保藏管理中心;所述华根霉的保藏编号为CCTCC WF 2008007,购自中国典型培养物保藏中心?
4.根据权利要求1所述的亚麻蛋白的提取方法,其特征在于,所述步骤(2)中的华根霉孢子悬液与亚麻籽粕的体积质量比为5mL:100g,利文斯顿岛节杆菌菌液与亚麻籽粕的质量体积比为10mL:100g?
5.根据权利要求1所述的亚麻蛋白的提取方法,其特征在于,所述步骤(2)中利文斯顿岛节杆菌菌液和华根霉孢子悬液的体积比为2:1?
6.根据权利要求1所述的亚麻蛋白的提取方法,其特征在于,所述步骤(2)中亚麻籽粕与无菌水的质量体积比为1kg:5L?
7.一种权利要求1 6任意一项所述亚麻蛋白的提取方法制得的亚麻蛋白粉?
技术领域
本发明属于食品加工技术领域,具体涉及一种亚麻蛋白的提取方法及所得亚麻蛋白粉?
背景技术
近年来,植物蛋白基食品浪潮不断兴起,发展势头迅猛,新型产品层出不穷?动物蛋白缺点的暴露以及对植物蛋白认识的深入使得植物蛋白成为食品领域关注的焦点?相对于动物蛋白,植物蛋白的生产利用具有绿色安全?环境友好和可持续发展的优势,同时植物种植成本低?生产蛋白能力高效,更加符合社会发展需求?
亚麻籽是亚麻的种子,作为油料作物广泛种植,从榨油后的饼粕中提取蛋白质,可大大提高亚麻籽的整体利用度?已有研究证明,亚麻籽蛋白及其多肽具有抑制血管紧张素转换酶活性?抗菌?抗糖尿病等多种生理功效,随着全球对健康饮食的关注,植物蛋白替代动物蛋白的趋势越来越明显,亚麻籽粕蛋白因其营养价值丰富?经济效益高而受到消费者的青睐,因此提高亚麻籽粕蛋白的提取效率,将亚麻籽粕作为蛋白质的宝贵来源势在必行?
亚麻籽蛋白的提取方法多样,包括除盐沉淀法?碱提酸沉法和超声法等,目前广泛使用的是碱提酸沉法,但碱溶酸沉法提取率较低,且强碱性容易导致蛋白质变性,因此,急需开发一种条件温和的亚麻蛋白的提取方法,不仅能提高亚麻蛋白的提取率,还能改善亚麻蛋白的功能特性?
发明内容
本发明针对校友技术存在的问题,提供一种条件温和的提取亚麻蛋白的方法,使得所提取的亚麻蛋白提取率高?纯度高?功能特性优?
为实现上述技术目的,本发明所采用的技术方案为:
一种亚麻蛋白的提取方法,包括以下步骤:
(1)菌种活化与扩培:将利文斯顿岛节杆菌和华根霉解冻后分别在LB固体培养基和PDA培养基中活化,先将利文斯顿岛节杆菌单菌落接种至LB液体培养基中,继续20℃?180rpm震荡培养得到利文斯顿岛节秆菌菌液;再将华根霉继续在PDA培养基25℃培养5 7天,用无菌生理盐水冲洗PDA培养面,刮取表面孢子,通过滤布过滤,去除菌丝,将孢子悬液进行稀释得到华根霉孢子悬浮液;
(2)协同发酵:亚麻籽粕粉碎过120目筛,将亚麻籽粕与无菌水混合,121℃灭菌20分钟,冷却至室温,先接种华根霉孢子悬浮液,25℃静置培养48h,再接种利文斯顿岛节杆菌菌液,20℃?150rpm震荡培养72h,协同发酵完成后,100℃灭活酶和菌体,8000rpm离心15min,取上清液;
(3)盐析法提取蛋白:调节上清液pH至4.5,8000rpm离心15mim收集沉淀,用PBS重悬,再将上清液pH调节至7.0,缓慢加入硫酸铵至30%饱和度,4℃搅拌30min,10000rpm离心20min,弃沉淀,将上清液补加硫酸铵至75%饱和度,4℃搅拌30min 1h,4℃?12000rpm离心20min收集沉淀,用超滤法浓缩蛋白,冷冻干燥得到亚麻蛋白?
进一步的,所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌菌液培养至活菌数达到1×108CFU/mL;华根霉孢子悬液稀释至孢子数达到1×107CFU/mL?
进一步的,所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌的保藏编号为CGMCC1.15658,购自中国普通微生物保藏管理中心,原始保藏日期为2016年3月5日;所述华根霉的保藏编号为CCTCC WF 2008007,购自中国典型培养物保藏中心,原始保藏日期为2005年1月19日?
进一步的,所述步骤(2)中的华根霉孢子悬液与亚麻籽粕的体积质量比为5mL:100g,利文斯顿岛节杆菌菌液与亚麻籽粕的质量体积比为10mL:100g?
更进一步的,所述步骤(2)中利文斯顿岛节杆菌菌液和华根霉孢子悬液的体积比为2:1?
进一步的,所述步骤(2)中亚麻籽粕与无菌水的质量体积比为1kg:5L?
本发明还提供了所述亚麻蛋白的提取方法提取得到的亚麻蛋白粉?
亚麻籽粕中含有果胶?纤维素等细胞壁成分,这些成分会包裹蛋白,阻碍其释放?华根霉能够分泌果胶酶和纤维素酶,果胶酶通过分解果胶物质,瓦解植物细胞壁及胞间层,降低黏度使胞内物质更容易释放,与纤维素酶协同作用,可进一步提升效果,破坏细胞壁的致密结构,释放更多被包裹的蛋白质,从而显著提高蛋白得率?同时果胶酶和纤维素酶将果胶?纤维素水解为可溶性小分子糖类(如半乳糖醛酸?葡萄糖),这些杂质在后续离心和盐析步骤中易被去除,减少共沉淀,提高蛋白纯度?进一步的细胞壁的降解使原本被包裹的蛋白质暴露更多亲水性氨基酸残基(如天冬氨酸?谷氨酸),增强蛋白与水的相互作用,从而提高蛋白溶解性?
亚麻籽粕中含有压榨完后的残留油脂,残留油脂常以油滴形式包裹或吸附在蛋白质颗粒表面,形成物理屏障?利文斯顿岛节杆菌能够分泌脂肪酶,将亚麻籽粕中的残留油脂进一步分解,脂肪酶分解油脂后,蛋白质与油脂的结合力降低,能够彻底解除油脂对蛋白质的束缚,释放更多原本被油脂包裹的蛋白质,从而提高提取率?油脂残留会增加体系的黏度,阻碍蛋白质的扩散,此外油脂降解后,原本溶解于油脂的脂溶性杂质(如色素?脂溶性维生素)释放量减少,降低其在提取液中的浓度,避免与蛋白质共沉淀,从而提高亚麻蛋白纯度?
有益效果
本发明通过华根霉和利文斯顿岛节杆菌的协同发酵能更彻底破坏亚麻籽粕的细胞壁和油脂屏障,形成多维度提取优势,显著提高亚麻蛋白提取量,且提取条件温和,有利于维持蛋白质结构,改善亚麻蛋白溶解度,此外避免了高温或强碱处理对蛋白质的破坏,同时减少杂质残留,提升亚麻蛋白纯度?本发明亚麻蛋白的提取方法还改善了蛋白的功能特性?
本发明提取方法能最大限度获得高附加值的优质蛋白,为亚麻籽粕生产亚麻蛋白提供了新的有效途径?
附图说明
图1为本发明实施例1?对比例1 4提取的亚麻蛋白的起泡性结果图;
图2为本发明实施例1?对比例1 4提取的亚麻蛋白的泡沫稳定性结果图?
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明的技术方案做进一步说明,但不限于此?
实施例1
一种亚麻蛋白的提取方法,包括以下步骤:
(1)菌种活化与扩培:将利文斯顿岛节杆菌和华根霉解冻后分别在LB固体培养基和PDA培养基中活化,先将利文斯顿岛节杆菌单菌落接种至LB液体培养基中,继续20℃?180rpm震荡培养得到利文斯顿岛节秆菌菌液;再将华根霉继续在PDA培养基25℃培养5 7天,用无菌生理盐水冲洗PDA培养面,刮取表面孢子,通过滤布过滤,去除菌丝,将孢子悬液进行稀释得到华根霉孢子悬浮液;
(2)协同发酵:亚麻籽粕粉碎过120目筛,将亚麻籽粕与无菌水混合,121℃灭菌20分钟,冷却至室温,先接种华根霉孢子悬浮液,25℃静置培养48h,再接种利文斯顿岛节杆菌菌液,20℃?150rpm震荡培养72h,协同发酵完成后,100℃灭活酶和菌体,8000rpm离心15min,取上清液;
(3)盐析法提取蛋白:调节上清液pH至4.5,8000rpm离心15mim收集沉淀,用PBS重悬,再将上清液pH调节至7.0,缓慢加入硫酸铵至30%饱和度,4℃搅拌30min,10000rpm离心20min,弃沉淀,将上清液补加硫酸铵至75%饱和度,4℃搅拌30min 1h,4℃?12000rpm离心20min收集沉淀,用超滤法浓缩蛋白,冷冻干燥得到亚麻蛋白?
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌菌液培养至活菌数达到1×108CFU/mL;华根霉孢子悬液稀释至至孢子数达到1×107CFU/mL?
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌的保藏编号为CGMCC1.15658,购自中国普通微生物保藏管理中心;所述华根霉的保藏编号为CCTCC WF 2008007,购自中国典型培养物保藏中心?
所述步骤(2)中的华根霉孢子悬液与亚麻籽粕的体积质量比为5mL:100g,利文斯顿岛节杆菌菌液与亚麻籽粕的质量体积比为10mL:100g?
所述步骤(2)中利文斯顿岛节杆菌菌液和华根霉孢子悬液的体积比为2:1?
所述步骤(2)中亚麻籽粕与无菌水的质量体积比为1kg:5L?
菌株功能鉴定
产脂肪酶鉴定:用接种针将利文斯顿岛节杆菌和华根霉分别接种至脂肪平板上,培养24h,测定培养基中菌落透明圈直径(D)与菌落直径(d),计算D/d,并将菌株接种到LB液体培养基中,20℃?200r/min培养24h得到种子液,以5%的接种量将种子液加入到发酵培养基中,20℃?200r/min培养24h,取发酵液,离心后取上清液,采用GB/T 23535 2009《脂肪酶制剂酶活测定方法》中的酸碱滴定法测定菌株的脂肪酶活力;
降解纤维素能力鉴定:通过刚果红染色法进行,即使用移液枪吸取200μL菌液接种至刚果红筛选培养基,置于25℃培养箱培养48h,观察纤维素降解圈,并测量菌落直径(d)和透明圈直径(D)计算D/d比值;纤维素酶活力测定参考DNS比色法进行;
产果胶酶鉴定:采用双层牛津杯法,将50μL各菌液注入以果胶为唯一碳源的培养基孔内,37℃静置24h后,加入碘液浸没平板,室温下静置10min?通过观察是否存在透明圈判断菌株是否存在果胶酶活性,并测量透明圈的直径(D)与菌落直径(d),计算D/d比值;采用DNS法测定其果胶酶活性?
表1 菌株功能鉴定结果
注：“—”代表反应为阴性。
由表1数据可知，利文斯顿岛节杆菌具有分泌脂肪酶和纤维素酶的能力，华根霉具有分泌果胶酶和纤维素酶的能力。
对比例1
一种亚麻蛋白的提取方法，包括以下步骤：
(1)菌种活化与扩培：将利文斯顿岛节杆菌和华根霉解冻后分别在LB固体培养基和PDA培养基中活化，先将利文斯顿岛节杆菌单菌落接种至LB液体培养基中，继续20℃、180rpm震荡培养得到利文斯顿岛节秆菌菌液；再将华根霉继续在PDA培养基25℃培养5 7天，用无菌生理盐水冲洗PDA培养面，刮取表面孢子，通过滤布过滤，去除菌丝，将孢子悬液进行稀释得到华根霉孢子悬浮液；
(2)协同发酵：亚麻籽粕粉碎过120目筛，将亚麻籽粕与无菌水混合，121℃灭菌20分钟，冷却至室温，先接种华根霉孢子悬浮液，25℃静置培养48h，再接种利文斯顿岛节杆菌菌液，20℃、150rpm震荡培养72h，协同发酵完成后，100℃灭活酶和菌体，8000rpm离心15min，取上清液；
(3)盐析法提取蛋白：调节上清液pH至4.5，8000rpm离心15mim收集沉淀，用PBS重悬，再将上清液pH调节至7.0，缓慢加入硫酸铵至30％饱和度，4℃搅拌30min，10000rpm离心20min，弃沉淀，将上清液补加硫酸铵至75％饱和度，4℃搅拌30min 1h，4℃、12000rpm离心20min收集沉淀，用超滤法浓缩蛋白，冷冻干燥得到亚麻蛋白。
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌菌液培养至活菌数达到1×108CFU/mL；华根霉孢子悬液稀释至至孢子数达到1×107CFU/mL。
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌的保藏编号为CGMCC1.15658，购自中国普通微生物保藏管理中心；所述华根霉的保藏编号为CCTCC WF 2008007，购自中国典型培养物保藏中心。
所述步骤(2)中的华根霉孢子悬液与亚麻籽粕的体积质量比为10mL：100g，利文斯顿岛节杆菌菌液与亚麻籽粕的质量体积比为5mL：100g。
所述步骤(2)中利文斯顿岛节杆菌菌液和华根霉孢子悬液的体积比为1：2。
所述步骤(2)中亚麻籽粕与无菌水的质量体积比为1kg：5L。
本对比例与实施例1相比，除改变利文斯顿岛节杆菌菌液和华根霉孢子悬液的体积比为1：2外，其余原料和步骤均同实施例1。
对比例2
一种亚麻蛋白的提取方法，包括以下步骤：
(1)菌种活化与扩培：将利文斯顿岛节杆菌和华根霉解冻后分别在LB固体培养基和PDA培养基中活化，先将利文斯顿岛节杆菌单菌落接种至LB液体培养基中，继续20℃、180rpm震荡培养得到利文斯顿岛节秆菌菌液；再将华根霉继续在PDA培养基25℃培养5 7天，用无菌生理盐水冲洗PDA培养面，刮取表面孢子，通过滤布过滤，去除菌丝，将孢子悬液进行稀释得到华根霉孢子悬浮液；
(2)协同发酵：亚麻籽粕粉碎过120目筛，将亚麻籽粕与无菌水混合，121℃灭菌20分钟，冷却至室温，先接种华根霉孢子悬浮液，25℃静置培养48h，再接种利文斯顿岛节杆菌菌液，20℃、150rpm震荡培养72h，协同发酵完成后，100℃灭活酶和菌体，8000rpm离心15min，取上清液；
(3)盐析法提取蛋白：调节上清液pH至4.5，8000rpm离心15mim收集沉淀，用PBS重悬，再将上清液pH调节至7.0，缓慢加入硫酸铵至30％饱和度，4℃搅拌30min，10000rpm离心20min，弃沉淀，将上清液补加硫酸铵至75％饱和度，4℃搅拌30min 1h，4℃、12000rpm离心20min收集沉淀，用超滤法浓缩蛋白，冷冻干燥得到亚麻蛋白。
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌菌液培养至活菌数达到1×108CFU/mL；华根霉孢子悬液稀释至至孢子数达到1×107CFU/mL。
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌的保藏编号为CGMCC1.15658，购自中国普通微生物保藏管理中心；所述华根霉的保藏编号为CCTCC WF 2008007，购自中国典型培养物保藏中心。
所述步骤(2)中的华根霉孢子悬液与亚麻籽粕的体积质量比为7.5mL：100g，利文斯顿岛节杆菌菌液与亚麻籽粕的质量体积比为7.5mL：100g。
所述步骤(2)中利文斯顿岛节杆菌菌液和华根霉孢子悬液的体积比为1：1。
所述步骤(2)中亚麻籽粕与无菌水的质量体积比为1kg：5L。
本对比例与实施例1相比，除改变利文斯顿岛节杆菌菌液和华根霉孢子悬液的体积比为1：1外，其余原料和步骤均同实施例1。
对比例3
一种亚麻蛋白的提取方法，包括以下步骤：
(1)菌种活化与扩培：将华根霉解冻后在PDA培养基中活化，再将华根霉继续在PDA培养基25℃培养5 7天，用无菌生理盐水冲洗PDA培养面，刮取表面孢子，通过滤布过滤，去除菌丝，将孢子悬液进行稀释得到华根霉孢子悬浮液；
(2)发酵：亚麻籽粕粉碎过120目筛，将亚麻籽粕与无菌水混合，121℃灭菌20分钟，冷却至室温，接种华根霉孢子悬浮液，25℃静置培养5d，100℃灭活酶和菌体，8000rpm离心15min，取上清液；
(3)盐析法提取蛋白：调节上清液pH至4.5，8000rpm离心15mim收集沉淀，用PBS重悬，再将上清液pH调节至7.0，缓慢加入硫酸铵至30％饱和度，4℃搅拌30min，10000rpm离心20min，弃沉淀，将上清液补加硫酸铵至75％饱和度，4℃搅拌30min 1h，4℃、12000rpm离心20min收集沉淀，用超滤法浓缩蛋白，冷冻干燥得到亚麻蛋白。
所述步骤(1)中华根霉孢子悬液稀释至至孢子数达到1×107CFU/mL。
所述步骤(1)中华根霉的保藏编号为CCTCC WF 2008007，购自中国典型培养物保藏中心。
所述步骤(2)中的华根霉孢子悬液与亚麻籽粕的体积质量比为15mL：100g。
所述步骤(2)中亚麻籽粕与无菌水的质量体积比为1kg：5L。
本对比例与实施例1相比，除发酵过程仅用华根霉孢子悬液外，其余原料和步骤均同实施例1。
对比例4
一种亚麻蛋白的提取方法，包括以下步骤：
(1)菌种活化与扩培：将利文斯顿岛节杆菌解冻后在LB固体培养基中活化，将利文斯顿岛节杆菌单菌落接种至LB液体培养基中，继续20℃、180rpm震荡培养得到利文斯顿岛节秆菌菌液；
(2)发酵：亚麻籽粕粉碎过120目筛，将亚麻籽粕与无菌水混合，121℃灭菌20分钟，冷却至室温，直接接种利文斯顿岛节杆菌菌液，20℃、150rpm震荡培养5d，100℃灭活酶和菌体，8000rpm离心15min，取上清液；
(3)盐析法提取蛋白：调节上清液pH至4.5，8000rpm离心15mim收集沉淀，用PBS重悬，再将上清液pH调节至7.0，缓慢加入硫酸铵至30％饱和度，4℃搅拌30min，10000rpm离心20min，弃沉淀，将上清液补加硫酸铵至75％饱和度，4℃搅拌30min 1h，4℃、12000rpm离心20min收集沉淀，用超滤法浓缩蛋白，冷冻干燥得到亚麻蛋白。
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌菌液培养至活菌数达到1×108CFU/mL。
所述步骤(1)中利文斯顿岛节杆菌的保藏编号为CGMCC1.15658，购自中国普通微生物保藏管理中心。
所述步骤(2)中的利文斯顿岛节杆菌菌液与亚麻籽粕的质量体积比为15mL：100g。
所述步骤(2)中亚麻籽粕与无菌水的质量体积比为1kg：5L。本对比例与实施例1相比，除发酵过程中仅使用利文斯顿岛节杆菌菌液外，其余原料和步骤均同实施例1。
性能测试
亚麻蛋白粉的溶解度测定：将本发明实施例1，对比例1 4制备得到的蛋白粉按质量体积比为1:100加入去离子水，室温下100rpm的速度搅拌1h，离心，收集上清，取20mL上清液浓缩后测定蛋白含量，蛋白换算系数6.25。蛋白质溶解度＝上清液中蛋白质含量/原料中总的蛋白质含量×100％。
亚麻蛋白的提取率：将本发明实施例1和对比例1 4制备的亚麻蛋白按照国标GB/T5009.5 2016中凯氏定氮法测定蛋白质含量，蛋白质折算系数为6.25。亚麻籽粕蛋白的提取率根据公式计算：蛋白提取率(％)＝(B/m2)/(A/m1)×100，注：式中A表示亚麻籽粕中的蛋白质含量，g/100g；B表示提取的亚麻籽粕蛋白中蛋白质含量，g/100g；m1表示亚麻籽粕的质量，g；m2表示提取的亚麻籽粕蛋白质量，g。
亚麻蛋白的纯度：将本发明实施例1和对比例1 4制备的亚麻蛋白按照国标GB/T 5009.5 2016中凯氏定氮法测定氮含量和提取蛋白含量。蛋白纯度根据公式计算：蛋白纯度(％)＝(提取蛋白氮质量/g×6.25)/(提取蛋白质量/g)×100。亚麻蛋白持水性：称取一定质量的各处理组蛋白(m0)于10mL离心管中，称量蛋白与离心管的总质量(m1)。向离心管加入10mL蒸馏水，室温静置30min，8000r/min离心10min，将上清液中的水去除后称量沉淀和离心管的总质量(m2)。蛋白持水性根据公式计算：持水性＝(m2 m1)/m0×100％。
亚麻蛋白起泡性和泡沫稳定性：分别取各处理组15mL1mg/mL蛋白溶液于烧杯中(溶液高度H)，12000r/min均质2min，迅速测量起泡层高度(H0)，静置30min后，测定泡沫高度H30。起泡性根据公式计算：起泡性＝H0/H×100％；泡沫稳定性根据公式计算：泡沫稳定性＝H30/H×100％，具体结果见图1和图2。
表2 各提取方法提取的亚麻蛋白的检测结果
由表2可知，本发明采用利文斯顿岛节杆菌和华根霉发酵提取的亚麻蛋白，提取率高、蛋白纯度高、同时制备的蛋白粉溶解度高、持水性强。而改变菌剂组成成分的对比例3 4，两种菌的协同作用被打破，导致其提取的亚麻蛋白纯度和提取率显著降低，并且蛋白的功能特性包括持水性和溶解度也显著降低，表明本发明提取蛋白过程中使用的利文斯顿岛节杆菌和华根霉缺一不可。
需要说明的是，上述实施例仅仅是实现本发明的优选方式的部分实施例，而非全部实施例。显然，基于本发明的上述实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动的前提下所获得的其他所有实施例，都应当属于本发明保护的范围。
文章摘自国家发明专利,一种亚麻蛋白的提取方法及所得亚麻蛋白粉,发明人:王为凯,陈召永,孙成斌,申请号:202510765633.X,申请日:2025.06.10。
